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Chlorophyllfluoreszenz-Bildgeber

Produkteinführung

Das Chlorophyllfluoreszenz-Bildgebungssystem ist ein professionelles Instrument für die Erforschung der pflanzlichen Photosynthese. Es nutzt eine hochempfindliche CMOS-Kamera und eine LED-Lichtquellensteuerung zur schnellen, zerstörungsfreien Detektion und Bildanalyse der Chlorophyllfluoreszenz in Pflanzenblättern. Das System integriert zwei Kernfunktionen: die schnelle OJIP-Fluoreszenzkinetikmessung und die PAM-modulierte Fluoreszenzmessung. Dadurch ermöglicht es eine umfassende Bewertung der Aktivität des pflanzlichen Photosynthesesystems, der Lichtenergieausnutzungseffizienz und der Reaktion auf Umweltstress.

Dieses System zeichnet sich durch ein modulares Design mit hochintegrierter Hard- und Software aus. Es verfügt über eine benutzerfreundliche grafische Oberfläche, die sowohl Chinesisch als auch Englisch unterstützt, und kann in Forschung und Lehre in den Bereichen Pflanzenphysiologie, Ökologie, Agrarwissenschaften, Umweltwissenschaften und anderen Gebieten breit eingesetzt werden.

    Technische Spezifikationen

    Kamera:

    Auflösung: 1608 (H) × 1104 (V)

    Pixelgröße: 9µm × 9µm

    ★ Bildrate: 100 fps

    Pixeltiefe: 12 Bit

    Schnittstellentyp: USB 3.0

    Linsen- und optische Spezifikationen

    ★ Brennweite: 12 mm

    ★ Maximale Blendenöffnung: F/2.8 Dynamisch einstellbar

    Horizontales Sichtfeld (HFOV): ca. 62,11°

    Vertikales Sichtfeld (VFOV): ca. 44,83°

    Maximaler Bildgebungsbereich: 50 cm × 35 cm bei Standardarbeitsabstand

    Spezifikationen der Lichtquelle

    Blaulicht-Wellenlänge: 450 nm Anregungsquelle für die Fluoreszenzanregung

    Wellenlänge des roten Lichts: 630 nm Photochemisches Licht für PAM-Messungen

    Fernrotes Licht: 730 nm für spezielle Messanforderungen

    LED-Helligkeitsbereich: 1 % - 100 %, bis zu 1440 µmol/(m²·s)

    Messbereich

    1. OJIP-Messung

    Messdauer: 0,1–1,0 Sekunden, einstellbar, 1 Sekunde empfohlen

    LED-Helligkeit: 1 % - 100 %, entsprechend 90-1440 µmol/(m²·s), in 5-%-Schritten

    2. PAM-Messung

    Dunkeladaptionszeit: 0–3600 Sekunden, kann auf 0 gesetzt werden, um sie zu überspringen.

    Anzahl der Lichtzyklen: 1 - 100 Mal, Anzahl der Lichtadaptationsphasenzyklen

    Überwachungsdauer: 10–120 Sekunden/Zyklus, Überwachungszeit pro Zyklus

    Erholungszeit: 60–600 Sekunden, Dauer der Dunkelwiederherstellungsüberwachung

    Photochemische Intensität: 1000 - 30000, Helligkeitswert einer roten 630-nm-LED

    Sättigungspuls (Fm): 15 % - 100 %, Dunkeladaptations-Sättigungspuls (blaues Licht 450 nm)

    Sättigungspuls (Fm'): 15% - 100%, Lichtadaptiver Sättigungspuls (Blaues Licht 450nm)

    Abtastintervall: 0,1 - 10,0 Sekunden, Datenerfassungszeitintervall

    Messgenauigkeit

    1. Messung der Fluoreszenzintensität

    Dynamikbereich: 12 Bit (0-4095)

    Signal-Rausch-Verhältnis: >100:1

    Wiederholbarkeit: CV

    Linearität: R² > 0,999

    Empfindlichkeit: Fähig, schwache Fluoreszenzsignale zu erkennen

    2. Genauigkeit der Parameterberechnung

    Fv/Fm: ±0,005

    ΦPSII: ±0,01

    qP/qN: ±0,02

    NPQ: ±0,1

    PIABS: ±0,05

    3. Zeitauflösung

    OJIP-Modus: Minimales Erfassungsintervall 10 ms

    PAM-Modus: Minimales Abtastintervall 100 ms

    Belichtungszeit: 100 ms – 1000 ms (einstellbar)

    Reaktionszeit:

    4. Räumliche Auflösung

    ★ Bildauflösung: 1608 × 1104 Pixel

    Pixelgröße: 9µm × 9µm (Sensor)

    Tatsächliche räumliche Auflösung: Ungefähr 0,3 mm/Pixel (bei einem Sichtfeld von 50 cm × 35 cm)

    Sichtfeld: Horizontal 62,11°, Vertikal 44,83°

    ★ Bildbereich: Maximal 50 cm × 35 cm

    Funktionsbeschreibung

    1. Schnelle Fluoreszenzkinetikanalyse von OJIP

    Der OJIP-Messmodus dient der schnellen Bestimmung der Aktivität und der Lichtenergieausnutzungseffizienz des pflanzlichen Photosystems II (PSII). Durch Anregung mit starkem Licht wird der gesamte dynamische Prozess des Anstiegs der Fluoreszenz von der Anfangsfluoreszenz (Fo) zur maximalen Fluoreszenz (Fm) innerhalb einer Sekunde aufgezeichnet.

    Messprinzip: Nach Dunkeladaptation wird unter starker Lichteinstrahlung das PSII-Reaktionszentrum QA in Pflanzenblättern schrittweise vom oxidierten Zustand reduziert, was zu einem raschen Anstieg der Fluoreszenzintensität führt. Dieser Prozess spiegelt die Effizienz der Elektronentransportkette sowie die Anzahl und Aktivität der PSII-Reaktionszentren wider.

    Erhaltene Informationen:

    O-Punkt (Fo): Anfangsfluoreszenz, wenn alle PSII-Reaktionszentren geöffnet sind

    J-Punkt: Ungefähr 2 ms, was den Elektronentransport von QA nach QB widerspiegelt (berechnet)

    Ich weise darauf hin: Ungefähr 30 ms, was den reduzierten Zustand der PQ-Bibliothek widerspiegelt.

    P-Punkt (Fm): Maximale Fluoreszenz, wenn alle Reaktionszentren geschlossen sind.

    Wichtige berechnete Parameter:

    Grundparameter: Fv = Fm - Fo, Fv/Fm (Maximale photochemische Effizienz)

    Spezifische Aktivität: Mo (Anfangssteigung), Fläche (QA-Reduktionsfläche)

    Quantenausbeute: ΦPo (Einfangseffizienz), ΦEo (Elektronentransfereffizienz), ΦDo (Wärmeabgabe)

    Energiefluss: ABS/RC, Tro/RC, ETo/RC, DIo/RC

    Leistungsindex: PIABS (Comprehensive Performance Index)

    Anwendungsszenarien:

    Schnelles Screening von Pflanzenmaterialien

    Beurteilung des Ausmaßes der Umweltbelastung

    Überwachung von Veränderungen des Wachstumsstatus

    Vergleich der Auswirkungen verschiedener Behandlungen

    2. PAM-modulierte Fluoreszenzmessung

    Der PAM-Messmodus nutzt modulierte Fluoreszenztechnologie, um die Photosyntheseaktivität von Pflanzen unter verschiedenen Lichtbedingungen zu überwachen. Er kann zwischen photochemischer und nicht-photochemischer Löschung unterscheiden und ermöglicht so ein tieferes Verständnis der Lichtschutzmechanismen der Pflanze.

    Messverfahren:

    Dunkeladaptationsphase: Pflanzen entspannen sich in der Dunkelheit vollständig, und alle Reaktionszentren kehren in einen offenen Zustand zurück.

    Fo- und Fm-Messung: Messlicht und ein Sättigungspuls werden eingesetzt, um die dunkeladaptierten Fluoreszenzparameter zu bestimmen.

    Lichtadaptationsphase: Bereitstellung von photochemischem Licht zur Simulation natürlicher Lichtverhältnisse.

    Zyklische Überwachung: Sättigungsimpulse werden periodisch angelegt, um Fs und Fm' zu messen.

    Dunkelrelaxationsphase: Unmittelbar nach dem Abschalten des photochemischen Lichts wird Fernrotlicht angelegt, um die minimale photoadaptierte Fluoreszenz (Fo') zu bestimmen.

    Dunkelwiederherstellungserkennung: Schalten Sie sowohl das photochemische Licht als auch das Fernrotlicht ab und überwachen Sie den Fluoreszenzwiederherstellungsprozess.

    Wichtige Parameter:

    Fv/Fm: Maximale photochemische Effizienz von PSII (0 in gesunden Pflanzen) .78-0.84)

    ΦPSII: Tatsächliche photochemische Effizienz von PSII (Lichtenergieausnutzung unter Beleuchtung)

    qP: Photochemischer Löschkoeffizient (Anteil offener Reaktionszentren)

    qN: Nicht-photochemischer Löschkoeffizient (Photoprotektionsfähigkeit)

    NPQ: Nicht-photochemische Löschung (Grad der Wärmeabfuhr)

    ETR: Elektronentransportrate (photosynthetischer Ratenindex)

    Anwendungsvorteile:

    Zerstörungsfreie Messung, wiederholbare Überwachung

    Unterscheiden Sie zwischen photochemischen und nicht-photochemischen Prozessen.

    Echtzeitüberwachung dynamischer Veränderungen der Photosynthese

    Bewerten Sie die Effizienz von Lichtschutzmechanismen

    ★ 3. Datenanalyse und -visualisierung

    Grundlegende Fluoreszenzparameter (OJIP): F0, Fm, Fv, Fv/Fm

    JIP-Testparameter: ΦPo, ΦDo, ΦEo, ψEo, δRo, ABS/RC, TRo/RC, ETo/RC, DIo/RC, REo/RC, PI_abs, M0, Vj, Vi, Fläche, Sm, N

    Grundlegende Fluoreszenzparameter (PAM): F0, Fs, F0', Fv/Fm

    PAM-abgeleitete Parameter: ΦPSII, qP, qL, qN, NPQ, NPQ_SV, Rfd, Kf, Fs/Fm, Fs/Fm', PSII_geschlossen, PSII_geschlossener_See, tatsächlicher_Wirkungsgrad, Anregungsdruck, Fm_Abfall_Prozent, Wirkungsgrad_Abfall_Prozent, Vitalitätsindex, qP', qL_voll, PSII_geschlossener_See_voll, ΦNPH, ΦNO, Y_NPH, Y_NO, Rfd'

    Visualisierung

    Fluoreszenzbilder: Zeigt zweidimensionale Farbfluoreszenzbilder der einzelnen Parameter in den grundlegenden Fluoreszenzparametern (OJIP, PAM), den JIP-Testparametern und den PAM-abgeleiteten Parametern.

    Kinematische Kurven: OJIP-Kurven, relative variable Fluoreszenzkurven.

    Zeitreihenkurven: Kurven der Änderung der PAM-Fluoreszenzintensität.

    Parametertabellen: Übersichtliche Anzeige von Parameternamen, Werten und Einheiten.

    4. Bildverarbeitung und -analyse

    ★ Automatische Regionensegmentierung: Das System verwendet einen intelligenten Schwellenwertsegmentierungsalgorithmus, um Pflanzenblattbereiche in Bildern automatisch zu identifizieren und Störungen durch Hintergrund und andere Objekte zu eliminieren. Benutzer können diese Funktion nach Bedarf aktivieren oder deaktivieren.

    Manuelle Auswahl: Bei komplexen Hintergründen oder Situationen, die eine präzise Analyse bestimmter Bereiche erfordern, können Benutzer direkt rechteckige, kreisförmige und unregelmäßig geformte Bereiche auf dem FM-Bild auswählen und die Auswahlinformationen in Echtzeit anzeigen lassen.

    ★ Bildregionsmittelwert: Unterstützt die Auswahl von Punkten, Rechtecken, Kreisen und unregelmäßig geformten Regionen auf beliebigen Bildern und die Anzeige des Regionsmittelwerts in Echtzeit.

    Bildverbesserungsverarbeitung:

    Rauschunterdrückung mit Gauß-Filter

    Adaptive Kontrastverstärkung

    Wissenschaftliches Farbschema (Jet-Pseudofarbe)

    Farbmarkierungsanzeige des Zahlenbereichs

    5. Datenmanagement

    ★ Automatische Parameterspeicherung: Alle Messparameter (LED-Helligkeit, Messzeit, Anzahl der Zyklen usw.) werden nach der Änderung automatisch in der Konfigurationsdatei gespeichert und beim nächsten Start automatisch geladen, sodass keine wiederholten Einstellungen erforderlich sind.

    Exportfunktion für Ergebnisse:

    Bilder exportieren: Alle analysierten Bilder werden im PNG-Format exportiert, wobei die Originalauflösung erhalten bleibt.

    Parameter exportieren: Exportieren Sie Parametertabellen als CSV- oder Excel-Dateien zur einfachen statistischen Auswertung.

    Alles exportieren: Mit einem Klick können alle Bilder und Parametertabellen in ein angegebenes Verzeichnis exportiert werden.

    Dateibenennungskonvention: Exportierte Dateien werden automatisch nach dem Format „Muster + Seriennummer + Bildname“ benannt, wodurch die Quelle des Inhalts eindeutig identifiziert wird.

    6. Systemeinstellungen

    Sprachumschaltung: Klicken Sie auf die Schaltfläche zur Sprachumschaltung in der oberen rechten Ecke der Benutzeroberfläche, um sofort zwischen Chinesisch und Englisch zu wechseln. Die Spracheinstellungen werden automatisch gespeichert und bleiben auch nach einem Neustart erhalten.

    Parameterkonfiguration: Alle Messparameter unterstützen benutzerdefinierte Einstellungen, um sie an unterschiedliche experimentelle Anforderungen anzupassen. Das System bietet Parameter-Tooltips, die den Benutzern helfen, die Bedeutung und den empfohlenen Bereich jedes Parameters zu verstehen.

    Geräteverwaltung: Das System erkennt Kamera und LED-Controller beim Start automatisch und verbindet sich mit ihnen. Die Statusleiste zeigt den Verbindungsstatus der Geräte in Echtzeit an und ermöglicht so die rechtzeitige Erkennung und Behebung von Hardwareproblemen.

    Anwendungsbereich

    1. Pflanzenphysiologische Forschung

    Forschung zum Mechanismus der Photosynthese

    Aktivitätsbewertung des Fotosystems

    Analyse der Lichtenergienutzungseffizienz

    Forschung zur nicht-photochemischen Löschung

    Bewertung der Funktion der Elektronentransportkette

    2. Forschung zu Umweltstress

    Reaktion auf Dürrestress

    Auswirkungen von Temperaturstress

    Anpassungsfähigkeit an leichten Stress

    Schwermetalltoxizitätsbewertung

    Früherkennung von Schädlingen und Krankheiten

    3. Landwirtschaftliche Anwendungen

    Sortenprüfung

    Optimierung der Anbaubedingungen

    Bewertung der Düngemittelwirkung

    Pestizidschadenserkennung

    Wachstumsstatusüberwachung

    4. Ökologische Forschung

    Forschung zur Lichtanpassung von Pflanzen

    Photosynthetische Eigenschaften der Gemeinschaft

    Bewertung der Ökosystemfunktionen

    Reaktion auf den Klimawandel

    Bewertung der Biodiversität

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